2. 中国石油胜利油田分公司石油工程技术研究院, 山东东营 257000
2. Petroleum Engineering Technology Research Institute, Shengli Oilfield Company, SINOPEC, Dongying 257000, China
微生物采油分为内源微生物采油技术和外源微生物采油技术, 后者是指将具有采油功能微生物在地面发酵后注入到油藏中进行驱油的技术。该技术主要针对内源微生物匮乏的油藏, 具有目标功能菌明确的优势[1-6], 外源微生物油藏适应性是其能否在油藏内发挥作用的关键。油藏作为厌氧环境, 微生物厌氧生长代谢能力决定其油藏适应性和驱油性能。前期多数外源菌采油相关性能研究都是在好氧条件下开展[7-10], 而严格厌氧条件下的外源菌生长代谢以及调控方法研究较少, 笔者以一株采油常用的地衣芽孢杆菌为对象, 研究其在厌氧条件下的生长代谢及调控方法。
1 材料与方法 1.1 菌种及来源实验用菌株分离自胜利油田60 ℃油藏产出液中, 现保存于中石化微生物采油重点实验室的菌种保藏中心。菌株经16SDNA测序鉴定为地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)。
1.2 培养基基础培养基:葡萄糖4 g/L, 酵母粉1 g/L, 蛋白胨1 g/L, 磷酸氢二钾3 g/L。
优化培养基:添加硝酸钠作为电子受体, 在上述基础培养基中分别添加0、1、3、6 g/L不同质量浓度硝酸钠。
1.3 方法 1.3.1 菌株厌氧培养方法采用亨盖特微生物厌氧操作平台进行微生物厌氧培养基制备和培养, 实验步骤为:①在250 mL厌氧培养瓶中装入100 mL培养基; ②厌氧瓶中用高纯氮气除氧, 分装后密闭120 ℃灭菌; ③灭菌后培养基中接种5 mL菌株种子液, 60 ℃培养, 不同时间取样分析。
1.3.2 微生物生长曲线测定不同培养时间取培养液离心, 菌体重悬后利用紫外分光光度计在600 nm下测试OD值。
1.3.3 微生物乳化能力评价微生物乳化能力利用乳化指数方法评价, 即在25 mL定量管中将微生物培养液样品与柴油等量混合, 振荡器均匀振荡3 min后静止5 min测定乳化层高度(H1)和未乳化层高度(H2), 计算柴油乳化指数(R):R=H1/(H1+H2)。
1.3.4 微生物产气量分析微生物厌氧培养体系产气量是利用压力表通过检测厌氧瓶上部顶空的气体压力计算得出, 获得体系压力通过公式n=PV/RT计算产气物质的量。
1.3.5 生物乳化剂提取方法60 ℃培养48 h后, 培养液于4 ℃、8 000 r/min离心20 min除去菌体后, 过0.22 μm膜, 在上清液中加入3倍体积4 ℃预冷的酒精, 用玻璃棒搅拌均匀, 置于-20 ℃、4 h。8 000 r/min离心2 min, 沉淀用蒸馏水重悬透析后冷冻干燥, 得乳化剂粗提物, 20 ℃保存。
1.3.6 生物乳化剂种类鉴定生物乳化剂粗提物分别进行糖和蛋白质定量分析:总糖含量测定采用蒽酮-硫酸法测定[11]; 蛋白含量测定采用考马斯亮蓝法测定[12]; 蛋白质电泳采用SDS-PAGE蛋白质电泳操作方法[13]。
1.3.7 生物乳化剂结构红外光谱分析生物乳化剂粗提物在进行红外光谱分析之前, 要将溴化钾和生物乳化剂(粗品)在研钵中磨碎, 制作压片, 进行红外光谱分析。
1.3.8 挥发性脂肪酸分析挥发性脂肪酸分析进样量50 μL, 检测条件进样温度为300 ℃, 检测器(FID)温度为300 ℃, 升温程序为: 100 ℃(3 min)—10 ℃/min—240 ℃ (20 min), 载气为恒流1 mL/min的氮气。
1.4 物理模拟驱油利用室内物理模拟实验, 考察菌株厌氧激活条件下的驱油效率。实验模拟胜利油田沾3区块油藏条件, 实验过程为填装石英砂岩心, 渗透率1 μm2, 抽真空、饱和实验区块的地层水, 计算岩心的孔隙体积(VP), 饱和实验区块的脱水脱气原油, 计算岩心的原始含油量, 静置老化7 d。岩心一次水驱3倍孔隙体积, 一次水驱至岩心产出液含水率与实验区块油井平均含水率一致。注入0.3 VP菌株和营养剂, 其中菌株培养液占10%, 营养剂为葡萄糖4 g/L, 酵母粉1 g/L, 蛋白胨1 g/L, 磷酸氢二钾3 g/L, 硝酸钠3 g/L, 在60 ℃下恒温培养15 d。注地层水开展二次水驱, 待岩心出口含水率与区块油井平均含水率一致时停止水驱, 计算驱油效率, 同时进行3根岩心管平行实验。
2 结果分析 2.1 菌株不同条件下的生长曲线该株地衣芽孢杆菌为兼性微生物, 在好氧和厌氧条件下均可以生长(图 1), 但从生长曲线对比发现, 好氧生长速率远高于厌氧生长速率, 好氧10 h达到峰值, 而厌氧需要95 h达到峰值, 且好氧生长菌体量明显高于厌氧生长的菌体量, 好氧菌体OD600达到0.37, 而厌氧OD600仅为0.85。厌氧生长代谢明显弱于好氧生长代谢主要是该菌株前期筛选和培养都是在好氧条件下进行, 当从好氧生长环境转移到厌氧生长环境后, 菌株需要更长的时间适应厌氧环境。当把该菌株在厌氧环境中反复培养传代驯化5次以上, 菌株在厌氧条件下的生长速率明显提高, 48 h就达到生长的最大值, 比初始缩短了近100 h, 而且生物量也明显提升(图 2)。该研究结果表明外源菌通过好氧发酵的方式生产后注入油藏后适应性弱, 好氧发酵生产的外源菌需要同时配注空气来提高其油藏适应性, 或者通过厌氧发酵方式生产外源菌提高其油藏适应性。
原油的生物乳化是微生物驱油重要驱油机制, 而微生物对原油的厌氧乳化能力研究相对较少, 因此对菌株的厌氧代谢乳化能力评价以认识其驱油潜力。研究发现调整硝酸盐质量浓度对菌株厌氧生长代谢产乳化剂方面有明显影响(图 3), 当硝酸钠质量浓度提高到1 g/L以上时乳化指数能达到100%, 但当硝酸钠质量浓度达到6 g/L时乳化指数反而降低, 只有73%。上述实验结果表明添加适当比例电子受体对该菌株厌氧生长代谢产乳化剂具有促进作用, 但硝酸盐浓度过高后乳化指数反而降低, 这表明高电子受体条件下会降低该菌株合成乳化剂途径的代谢效率。
该菌株厌氧培养液提取出的乳化剂粗提物产率为0.25 g/g底物, 其中总糖占生物乳化剂总量的35.1%;蛋白质占生物乳化剂总量的16.0%, 由此可知该生物乳化剂主要是糖和蛋白质的聚合物。该乳化剂粗提物经蛋白酶K处理后, 乳化指数变为0, 说明蛋白组成部分是该类乳化剂的主要活性组分。
红外光谱分析(图 4)发现, 该生物乳化剂在3 423.37 cm-1处的吸收峰为N—H的伸缩振动的强吸收峰; 在2 925.84、1 311.84和1 241.88 cm-1处的吸收峰是C—H的伸缩振动峰; 1 653.52 cm-1处的吸收峰是C=O的伸缩振动引起的; 1 154~1 030 cm-1内存在低波数1 039.78 cm-1的强吸收, 为O—H的伸缩振动的特征吸收; 由红外光谱看出该乳化剂中含有较多的—OH和RCO—NHR基团, 这些基团为糖和蛋白的特征官能团。由此进一步推测糖和蛋白质为该乳化剂的主要化学组分。
通过蛋白质电泳图(图 5)看出, 26 000的蛋白质的条带颜色较亮, 说明组成的蛋白中存在含量较多的26 000的蛋白质。研究最多的生物乳化剂是Emulsan, 其主要结构为脂多糖类[14], 另一类研究较多生物乳化剂是Alasan, 为高分子聚糖和蛋白质的复合物, 其乳化活性物质也主要是蛋白质, 其中45 000的外膜蛋白A(OmpA)类似物前体(AlnA)是其乳化能力最强部分[15]。由此推测菌株所产乳化剂结构与Alasan更为接近。
目前研究主要集中在微生物好氧代谢产乳化剂, 例如王志荣等筛选获得一株在好氧条件下产乳化剂菌株Serratia sp.SCH—l, 该菌株好氧条件下乳化剂产率为0.75 g/L, 但未考察其厌氧条件下的乳化能力[16]。目前已报道的能够厌氧产表面活性剂的菌种资源比较少。Youssef等[17]发现巴氏梭状芽胞杆菌(Clostridium pasteurianum)能在厌氧条件下产生胞外中性脂类表面活性剂, 地衣芽胞杆菌RS-I和枯草芽胞杆菌NRRLB-23049能够在厌氧条件下产生脂肽类表面活性剂。铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa)ATCC 10145在棕榈酸一硝酸盐培养基中, 可以通过硝酸盐呼吸在缺氧条件下合成鼠李糖脂表面活性剂[18]。厌氧表面活性剂产率普遍较低, 而且均为厌氧产小相对分子质量的表面活性剂, 相对分子质量在1 000以内。笔者首次发现地衣芽孢杆菌杆菌在厌氧条件下产大相对分子质量蛋白多糖类乳化剂[19]。
2.4 厌氧代谢产气特性微生物产气是微生物驱油的另一个重要机制, 通过产生生物气溶解于原油可以降低原油黏度, 同时提高储层压力, 从而提高驱油效率。该菌株在厌氧环境下能够产生生物气, 气体组分分析发现所产生物气为二氧化碳(表 1), 而且二氧化碳含量随着硝酸钠质量浓度升高而升高, 当硝酸钠质量浓度为6 g/L时二氧化碳产量达到7.3 mmol(图 6), 说明电子受体提高了微生物的厌氧代谢活性, 促进了菌株产气能力。
乙酸、丙酸和丁酸等挥发性脂肪酸是微生物厌氧代谢的重要中间代谢产物, 通常会作为油藏微生物代谢活跃程度的一个重要指标被监测。该菌株在厌氧代谢过程中也会产生挥发性脂肪酸, 随着培养时间延长其质量浓度不断提高, 但硝酸钠质量浓度增加, 所产挥发性脂肪酸质量浓度反而降低, 未添加硝酸钠的样品中脂肪酸质量浓度达到876 mg/L, 而添加质量浓度为6 g/L硝酸钠的样品脂肪酸质量浓度仅为277 mg/L(图 7)。添加硝酸钠导致挥发性脂肪酸质量浓度降低, 主要是由于硝酸钠的添加促进了该菌株厌氧代谢产气, 根据物质守恒定律, 当总的底物碳源不变的条件下, 产气多的样品挥发性脂肪酸的产量就会减少。
在模拟胜利油田沾3区块油藏条件, 开展菌株厌氧激活驱油效率评价(图 8), 该菌株在一次水驱含水率达到95%的基础上, 采出程度从40.7%提高到46.8%, 驱油效果显著, 提高采收达到16.0%, 含水率下降显著, 由95%下降到87.3%, 且产出液中原油存在明显乳化现象。以上结果说明, 该菌株在油藏条件下能通过乳化和产气等综合作用提高水驱效率, 表现出良好的应用潜力。
(1) 采油用地衣芽孢杆菌作为兼性菌在好氧和厌氧条件下均可以生长代谢, 通过合适的营养体系可以实现该菌株在厌氧条件下产生乳化、产气和驱油功能, 展现出良好的油藏适应性和采油潜力。
(2) 首次发现在严格厌氧条件下该株地衣芽孢杆菌产生蛋白多糖类大分子乳化剂。
(3) 以硝酸钠作为电子受体可以显著提高菌株厌氧代谢活性。
[1] |
GAO C H, ZEKRI A. Applications of microbial-enhanced oil recovery technology in the past decade[J]. Energy Sources, 2011, 10(33): 972-989. |
[2] |
ZAHNER R L, TAPPER S J, MARCOTTE B W G, et al. What has been learned from a hundred MEOR applications[R]. SPE 145054, 2011.
|
[3] |
TOWN K, ENERGY H, SHEEHY A J, et al. MEOR success in southern Saskatchewan[R]. SPE 124319, 2009.
|
[4] |
LEWIS R B. Microbial enhanced oil recovery[J]. Current Opinion in Microbiology, 2010, 13(3): 316-320. DOI:10.1016/j.mib.2010.01.011 |
[5] |
WANG Jun, MA Ting, ZHAO Lingxia, et al. Monitoring exogenous and indigenous bacteria by PCR-DGGE technology during the process of microbial enhanced oil recovery[J]. J Ind Microbiol Biotechnol, 2008, 35(6): 619-628. DOI:10.1007/s10295-008-0326-9 |
[6] |
汪卫东. 微生物采油技术研究及试验[J]. 石油钻采工艺, 2012, 34(1): 107-113. WANG Weidong. Laboratory research and field trials of microbial oil recovery technique[J]. Oil Drilling & Production Technology, 2012, 34(1): 107-113. DOI:10.3969/j.issn.1000-7393.2012.01.030 |
[7] |
宋茂勇, 林建强, 魏玉华, 等. 芽孢杆菌S-1提高石油采收率研究[J]. 山东大学学报(理学版), 2004, 39(1): 117-120. SONG Maoyong, LIN Jianqiang, WEI Yuhua, et al. The study on the characteristics of oil recovery enhancing microbiology of Bacillus S-1[J]. Journal of Shandong University(Natural Science), 2004, 39(1): 117-120. DOI:10.3969/j.issn.1671-9352.2004.01.027 |
[8] |
郭万奎, 侯兆伟, 石梅, 等. 短芽孢杆菌和蜡状芽孢杆菌采油机制及其在大庆特低渗透油藏的应用[J]. 石油勘探与开发, 2007, 34(1): 73-78. GUO Wankui, HOU Zhaowei, SHI Mei, et al. The recobery mechanism and application of Brevibacillus brevis and Bacillus cereus in extra-low permeability reservoir of Daqing[J]. Petroleum Exploration and Development, 2007, 34(1): 73-78. DOI:10.3321/j.issn:1000-0747.2007.01.014 |
[9] |
巴燕, 李彩风, 刘涛, 等. 一株高温嗜热解烃菌的筛选及应用[J]. 中国化工贸易, 2012(4): 2-4. BA Yan, LI Caifeng, LIU Tao, et al. Screening and application of a high temperature hydrophilic hydrocarbon bacterium[J]. China Chemical Trade, 2012(4): 2-4. |
[10] |
杜国丰. 一株稠油降解菌的筛选及其产物乳化性能研究[J]. 环境科学与管理, 2016, 41(7): 55-59. DU Guofeng. Study on screening a strain of degrading bacteria using thick oil and emulsifying properties of its metabolites[J]. Environmental Science and Management, 2016, 41(7): 55-59. DOI:10.3969/j.issn.1673-1212.2016.07.014 |
[11] |
汤灿辉, 彭新君, 文礼章, 等. 蒽酮一硫酸比色法测定三叶虫茶中总糖的含量[J]. 湖南中医药大学学报, 2008, 28(5): 38-40. TANG Canhui, PENG Xinjun, WEN Lizhang, et al. Determination of total sugars in Sanyechong tea with anthrone-sulfuric colorimetric method[J]. Journal of TCM University of Hunan, 2008, 28(5): 38-40. DOI:10.3969/j.issn.1674-070X.2008.05.011 |
[12] |
王孝平, 邢树礼. 考马斯亮蓝法测定蛋白质的研究[J]. 天津化工, 2009, 23(3): 40-41. WANG Xiaoping, XING Shuli. Determination of protein by comus brilliant blue method[J]. Tianjin Chemical, 2009, 23(3): 40-41. DOI:10.3969/j.issn.1008-1267.2009.03.016 |
[13] |
李建武. 生物化学实验原理和方法[M]. 北京: 北京大学出版社, 1994.
|
[14] |
李晴, 邵宗泽. 不动杆菌生物乳化剂活性成分研究[J]. 应用与环境生物学报, 2008, 14(4): 553-557. LI Qing, SHAO Zongze. Components in bioemulsifier produced by acinetobacter strains[J]. Journal of Applied and Environmental Biology, 2008, 14(4): 553-557. DOI:10.3321/j.issn:1006-687X.2008.04.024 |
[15] |
VENEZIA N S, ZOSLM Z, GOTTLIEB A, et al. Alasan, a new bioemulsifier from Acinetobacter radioresistens[J]. Appl Environ Microbiol, 1995, 61(9): 3240-3244. |
[16] |
王志荣, 孙俊, 辛鑫, 等. 一株生物乳化剂产生菌的筛选及其特性研究[J]. 绿色科技, 2015, 10(6): 279-281. WANG Zhirong, SUN Jun, XIN Xin, et al. Screening and characterization of a bioemulsifier producing bacteria[J]. Journal of Green Science and Technology, 2015, 10(6): 279-281. |
[17] |
YOUSSEF N, SIMPSON D R, DUNCAN K E, et al. Insitu biosurfactant production by Bacillus strains injected into a limestone petroleum reservoir[J]. Appl Environ Microbiol, 2007, 73(4): 1239-1247. DOI:10.1128/AEM.02264-06 |
[18] |
YOUSSEF N, SIMPSON D R, MCINERNEY M J, et al. Insitu lipopeptide biosurfactant production by Bacillus strains correlates with improved oil recovery in two oil wells approaching their economic limit of production[J]. Int Biodeterior Biodegradation, 2013(81): 127-132. |
[19] |
赵峰, 张颖. 厌氧产表面活性剂微生物提高原油采收率的研究进展[J]. 生物资, 2018, 40(2): 101-106. ZHAO Feng, ZHANG Ying. Advances in enhanced oil recovery by biosurfactant producing microorganisms under anaerobic conditions[J]. Biotic Resources, 2018, 40(2): 101-106. |